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ELISA检测抗体抗原(上)
作者:南京金益柏生物科技有限公司    发布于:2016-07-13 09:44:24    文字:【】【】【

ELISA检测抗体抗原(上)ELISA可用于测定抗原,也可用于测定抗体。在这种测定方法中有三个必要的试剂:

1)固相的抗菌素原或抗体,即"免疫吸附剂  "(immunosorbent);(2)酶标记的抗原或抗体,称为"结合物"(conjugate);

3)酶反应的底物。根据试剂的来源和标本的情况以及检测的具体条件,可设计出各种不同类型的检测方法。用于临床检验的 ELISA主要有以下几种类型:
双抗体夹心法测抗原
双抗体夹心法是检测抗原最常用的方法,操作步骤如下:
1)将特异性抗体与固相载体联结,形成固相抗体。洗涤除去未结合的抗体及杂质。
2)加受检标本,保温反应。标本中的抗原与固相抗体结合,形成固相抗原抗体复合物。洗涤除去其他未结合物质。
3) 加酶标抗体,保温反应。固相免疫复合物上的抗原与酶标抗体结合。彻底洗涤未结合的酶标抗体。此时固相载体上带有的酶量与标本中受检抗原的量相关。

4)加底物显色。固相上的酶催化底物成为有色产物。通过比色,测知标本中抗原的量。在临床检验中,此法适用于检验各种蛋白质等大分子抗原,例如 HBsAg  、HBeAg、AFP  、hCG 等。只要获得针对受检抗原的异性抗体,就可用于包被固相载体和制备酶结合物而建立此法。如抗体的来源为抗血清,包被和酶标用的抗体最好分别取自不同种属的动物。如应用单克隆抗体,一般选择两个针对抗原上不同决定簇的单抗,分别用于包被固相载体和制备酶结合物。这种双位点夹心法具有很高的特异性,而且可以将受检标本和酶标抗体一起保温反应,作一步检测。


在一步法测定中,当标本中受检抗原的含量很高时,过量抗原分别和固相抗体及酶标抗体结合,而不再形成  "夹心复合物"。类同于沉淀反应中抗原过剩的后带现象,此时反应后显色的吸光值(位于抗原过剩带上)与标准曲线(位于抗体过剩带上)某一抗原浓度的吸光值相同,如按常法测读,所得结果将低于实际的含量,这种现象被称为钩状效应(hook effect),因为标准曲线到达高峰后呈钩状弯落。钩状效应严重时,反应甚至可不显色而出现假阴性结果。因此在使用一步法试剂测定标本中含量可异常增高的物质(例如血清中 HBsAg  、AFP  和尿液  hCG  等)时,应注意可测范围的最高值。用高亲和力的单克隆抗体制备此类试剂可削
弱钩状效应。
ELISA检测抗体抗原(上)假使在被测分子的不同位点上含有多个相同的决定簇,例如  HBsAg  的 a  决定簇,也可用针对此决定的同一单抗分别包被固相和制备酶结合物。但在  HBsAg  的检测中应注意亚型问题,HBs Ag  有 adr、adw、ayr  、ayw4  个亚型,虽然每种亚型均有相同的 a决定簇的反应性,这也是用单抗作夹心法应注意的问题。
双抗体夹心法测抗原的另一注意点是类风湿因子(  RF)的干扰。RF  是一种自身抗体,
多为  IgM  型,能和多种动物  IgG  的  Fc  段结合。用作双抗体夹心法检测的血清标本中如含
有 R  F,它可充当抗原成份,同时与固相抗体和酶标抗体结合,表现出假阳性反应。采用 F
(ab')或  Fab  片段作酶结合物的试剂,由于去除了  Fc  段,从而消除  RF  的干扰。双抗体
夹心法 ELISA  试剂是否受 RF  的影响,已被列为这类试剂的一项考核指标。
双抗体夹心法适用于测定二价或二价以上的大分子抗原,但不适用于测定半抗原及小分
子单价抗原,因其不能形成两位点夹心。
双抗原夹心法测抗体

反应模式与双抗体夹心法类似。用特异性抗原进行包被和制备酶结合物,以检测相应的抗体。与间接法测抗体的不同之处为以酶标抗原代替酶标抗抗体。此法中受检标本不需稀释,可直接用于测定,因此其敏感度相对高于间接法。乙肝标志物中抗  HBs  的检测常采用本法。本法关键在于酶标抗原的制备,应根据抗原结构的不同,寻找合适的标记方法。


间接法测抗体
ELISA检测抗体抗原(上)间接法是检测抗体常用的方法。其原理为利用酶标记的抗抗体(抗人免疫球蛋白抗体)以检测与固相抗原结合的受检抗体,故称为间接法。操作步骤如下:
1)将特异性抗原与固相载体联结,形成固相抗原。洗涤除去未结合的抗原及杂质。
2)加稀释的受检血清,保温反应。血清中的特异抗体与固相抗原结合,形成固相抗原抗体复
合物。经洗涤后,固相载体上只留下特异性抗体,血清中的其他成份在洗涤过程中被洗去。
3)加酶标抗抗体。可用酶标抗人 Ig  以检测总抗体,但一般多用酶标抗人 IgG  检测 IgG  抗
体。固相免疫复合物中的抗体与酶标抗体抗体结合,从而间接地标记上酶。洗涤后,固相载
体上的酶量与标本中受检抗体的量正相关。
4)加底物显色
本法主要用于对病原体抗体的检测而进行传染病的诊断。间接法的优点是只要变换包被抗原
就可利用同一酶标抗抗体建立检测相应抗体的方法。
间接法成功的关键在于抗原的纯度。虽然有时用粗提抗原包被也能取得实际有效的结果,
但应尽可能予以纯化,以提高试验的特异性。特别应注意除去能与一般健康人血清发生反应
的杂质,例如以  E.Coli  为工程酶的重组抗原,如其中含有 E.Coli  成份,很可能与受过 E.Coli
感染者血甭中的抗 E.Coli  抗体发生反应。抗原中也不能含有与酶标抗人 Ig  反应的物质,例如来自人血浆或人体组织的抗原,如不将其中的 Ig去除,试验中也发生假阳性反应。另外如抗原中含有无关蛋白,也会因竟争吸附而影响包被效果。
间接法中另一种干扰因素为正常血清中所含的高浓度的非特异性。病人血清中受检的特异性  IgG  只占总 IgG  中的一小部分。IgG  的吸附性很强,非特异 IgG  可直接吸附到固相载体上,有时也可吸附到包被抗原的表面。因此在间接法中,抗原包被后一般用无关蛋白质(例如牛血清蛋白)再包被一次,以封闭(blocking)固相上的空余间隙。另外,在检测过程中标本须先行稀释ELISA检测抗体抗原(上)(1:40~1:200),以避免过高的阴性本底影响结果的判断。

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